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jueves, 18 de febrero de 2016

Técnica de Fibras con hematoxilina de Heidenhain

Por el bien de difundir los conocimientos y viendo que, a la hora de aclarar mis dudas sobre la técnica, en Internet no hay nada claro por lo que os dejo el protocolo que he realizado para tejido nervioso. Antes de comenzar, por lo que he visto por Internet, dependiendo del animal del que proceda el tejido las concentraciones de los reactivos pueden variar.
Para empezar se comienza con una hidratación en alcoholes decrecientes durante 5 minutos en cada uno de ellos.
  • 96º
  • 80º
  • 70
  • 50
Terminando en dos baños de agua destilada durante 5 minutos cada uno de ellos.
Posteriormente se introduce en el mordiente
  • Ferric ammonium sulfate (FAS) al 2,5% durante 45 minutos
Después de este paso lo tendríamos que lavar con agua destilada un tiempo para quitar el exceso del mordiente.
Tras el lavado lo introducimos en la solución del colorante, que en nuestro caso es la hematoxilina de Heidenhain 10% y carbonato de litio al 1%
  • La hematoxilina de Heidenhain se encuentra en una solución alcohólica, por lo que se realizará tres días antes al uso, con 5g de la Htx de Heidenhain y 50ml de alcohol absoluto mantenido en agitación.
Una vez terminada la Htx, con sus tres días en reposo (sin agitación), se procede a realizar la solución que se va a utilizar, siendo los porcentajes citados anteriormente. Las preparaciones se mantienen en esta solución durante 1h o 2h.
Es importante destacar que la concentración del cloruro de litio hará que la tinción esté más o menos teñida. A mayor concentración de cloruro de litio menos teñido se tendrá el tejido.
Al acabar con la Htx, se lava en agua destilada para retirar el exceso de Htx.
Finalmente para poder montar las preparación se deshidratan en alcoholes crecientes durante 5 minutos
  • 80º
  • 96º
  • 100º
  • xilol
El resultado macroscópico esperado, variando las concentraciones de Htx y del Cloruro de litio es este:

domingo, 13 de diciembre de 2015

Tinción Hematoxilina-Eosina

Introducción

De todas las tinciones de las que se puede realizar es sin duda la tinción de hematoxilina-eosina la más común en histología. Es una coloración de tipo topográfica ya que da una visión del conjunto de las estructuras del tejido.
Esta tinción está compuesta por dos colorantes: la hematoxilina, que es un colorante nuclear por lo que tiene un carácter acidófilo, y el otro colorante es la eosina, este colorante es citoplasmático o en otras palabras basófilo. 
La afinidad de un colorante por una determinada estructura es el radical del auxocromo, según dicho radical podrán ser ácidos, básicos, neutros y/o indiferentes. Como hemos dicho anteriormente, la hematoxilina se une al núcleo (estructura ácida) por lo que este colorante será básico. La eosina en cambio se une a estructuras básicas (como las proteínas que hay en el citoplasma) por lo que este colorante será ácido. 

Hematoxilina 

Primero hay que destacar que la hematoxilina no es el verdadero colorante sino el producto de la oxidación de éste, llamado hemateína. 
Además requieren de un mordiente, el alumbre potásico o amónico denominado hemalumbre
  • hematoxilina de Harris alumbre potásico
  • hematoxilina de Mayer alumbre amónico
  • hematoxilina de Weigert alumbre férrico
  • hematoxilina de Carazzi alumbre potásico
  • entre otras.
Cada una de las hematoxilina nos será útil para una determinada tinción.
Produce un color azul negruzco.

Eosina

Es un derivado xanténico. Hay dos tipos de eosinas, atendiendo a su composición:
  • Eosina Y con 4 átomos de Br
  • Eosina B con 2 átomso de Br
Se pueden usar en solución acuosa o alcohólica dependiendo de la tinción.
Produce un color rojo.

Procedimiento

  • Los cortes a teñir han de estar desparafinados, para ello se hacen baños en xilol 20 minutos
  • Hidratación de los cortes:
    • Alcohol 100º durante 2-5 minutos
    • Alcohol 100º durante 2-5 minutos
    • Alcohol 95º durante 2-5 minutos
    • Alcohol 95º durante 2-5 minutos
    • Agua corriente 2-5 minutos
  • Hematoxilina de Harris durante 10 minutos. Si se utiliza este tipo de hematoxilina se aconseja diferenciar.
  • Lavar con agua corriente hasta que el tejido deje de soltar colorante.
  • Diferenciación:  con una solución alcohol-ácida 1% hasta que veamos necesario, suelen ser unas pocas pasadas dependiendo del tipo de muestra.
  • Agua amoniacal 2% unos pocos segundos, para estabilizar la hematoxilina, además produce un azuleado. 
  • Lavado con agua corriente
  • Eosina alcohólica 3 minutos, al ser alcohólica en los alcoholes se nos diferenciará un poco.
  • Deshidratación, para preparar la muestra antes de introducirla en el xilol.
    • Alcohol 95º durante 2-5 minutos
    • Alcohol 95º durante 2-5 minutos
    • Alcohol 100º durante 2-5 minutos
    • Alcohol 100º durante 2-5 minutos
  • Xilol y montar el portaobjetos con nuestro medio de montaje como puede ser el DPX o Entellan

Resultados

Núcleos azules oscuros
Citoplasmas rosa
Fibras musculares y hematies rojos


Fig 1. Glomérulo de un riñón teñido con hematoxilina eosina